Ochranné účinky Cistanche proti H2O2/UVB-indukovanej degradácii dermálneho fibroblastového kolagénu prostredníctvom Hsa-microRNA-4535-sprostredkovanej signalizácie TGF/Smad Ⅱ

May 06, 2023

DISKUSIA

V tejto štúdii sme zistili, žeochranná úloha cistancheje sprostredkovaný prostredníctvom zoslabenia hsa-miR- 4535, ktorý sa zameriava na Smad4, čím reguluje signalizáciu Smad2/3/4, ako aj syntézu kolagénu v koži vystavenej H2O2/UVB-indukované poškodenie kože in vitroain vivo. Naše zistenia možno zhrnúť do šiestich hlavných bodov: (1) cistanche zoslabený H2O2- indukovaná starnutie buniek HS68, ale nie apoptóza pri dávke 30 uM; (2) H2O2/indukované UVBintracelulárne a mitochondriel Tvorba ROS a nerovnováha MMP boli následne zvrátenécistanche liečba; (3) cistanche výrazne zlepšila signalizáciu TGF/Smad, ako aj aktiváciu komplexu Samd2/3/4 v H2O2-exponované bunky; (4) zvýšená regulácia hsa-miR-4535 H2O2/UVB bolo potlačené nasledovnecistanche liečba; (5) hsa-miR- 4535 sa podieľa na regulácii signalizácie TGF/Smadzacielenie Smad4 na zhoršenú syntézu kolagénu v H2O2/bunky vystavené UVB; (6)topická aplikácia cistanchenanahá koža na chrbtemyši významne znížili indukciu UVBfotostarnutie pokožky,tvorba vrások, hyperplázia kože, a oslabeniesignálnych dráh TGF/Smad.


cistanche proteictive effect on skin care research


Obrázok 10. Účinok cistanche na UVB-indukované C57BL6/J fotopoškodenie kože nahých myší. (A) Schematický postup pokusov na zvieratách. Chrbtová koža štvortýždňových nahých myší C57BL6/J (n=6) ​​bola vystavená UVB žiareniu a liečená cistanche raz za dva dni počas 8 týždňov (B) Fotografia zobrazujúca tvorbu vrások na dorzálnej koži nahých myšiam v dôsledku expozície UVB, po ktorej nasleduje lokálna aplikácia cistanche.

cistanche proteictive effect on skin care research

Kliknite sem, aby ste sa dozvedeli o liečbe Cistanche pre redukciu pokožky Photoškody

Ľudská koža sa skladá z dvoch vrstiev: epidermis a dermis. Thekožná dermisobsahuje spojivové tkanivo, vlasové folikuly a potné žľazy. Dermálne fibroblasty ľudskej kože sú uložené v derme [33]. Rôzne štúdie ukázali, že vnútorné aj vonkajšie starnutie vedie k starnutiu kožných dermálnych fibroblastov v dôsledku akumulácie ROS [16, 34, 35]. Staré ľudské dermálne fibroblasty teda nevratne zastavia bunkový cyklus a strácajú svoje proliferačné schopnosti [36]. Ožarovanie H2O2 alebo UVB sú dobre charakterizované zdroje na urýchlenie produkcie ROS v ľudských dermálnych fibroblastoch [37, 38]. Tu sme zistili, že liečba cistanche (10–50 μM) nespôsobila cytotoxicitu, ale skôr podstatne zoslabila bunkovú smrť indukovanú H2O2/UVB v ľudských dermálnych fibroblastoch (obrázok 1E, 1F). Okrem toho liečba cistanche potlačila H2O2/UVB-indukovanú upreguláciu p16, p21 a počet SA- -gal-pozitívnych buniek (obrázok 2D). Takže demo ochranné účinky cistanche proti poškodeniu H2O2 alebo UVB môžu byť spojené s potlačením rôznych zdrojov ROS alebo integrity mitochondrií.


cistanche proteictive effect on skin care research

cistanche proteictive effect on skin care research

Obrázok 11. Lokálna aplikácia cistanche zoslabuje UVB indukciuhyperplázia kožea degradácia kolagénu v dorzálnej koži nahých myší C57BL6/J. Kožné tkanivá boli sériovo narezané a zafarbené H&E, Massonovým trichrómom a imunohistochemicky na p-Smad2/3 Smad4 a -gal. Farbenie H&E ukázalo hrúbku epidermy. Dvojité červené šípky označujú epidermálne zhrubnutie. Massonovo trichrómové farbenie ukázalo obsah kolagénových vlákien v dermálnych vrstvách. Kolagénové vlákna sú modré. LD, nízka dávka; HD, vysoká dávka.

cistanche proteictive effect on skin care research


cistancheúdajne vykazovali antiapoptotické a antioxidačné vlastnosti v rôznych bunkách, ako sú keratinocyty a kardiomyocyty [13, 39, 40]. Perorálne podávanie cistanche účinne potlačilo poškodenie pečene vyvolané streptozotocínom u diabetických potkanov znížením mitochondriálneho oxidačného poškodenia a zvýšením antioxidačnej signalizácie Nrf2 [13, 41]. Iné štúdie ukázali, že cistanche zlepšila hepatotoxicitu vyvolanú cyklofosfamidom a nefrotoxicitu vyvolanú cisplatinou zmiernením oxidačného stresu a zápalu [42, 43]. Expozícia dermálnych fibroblastov UVB alebo H2O2 vedie k akumulácii ROS v mitochondriách, čo vedie k fragmentácii mitochondrií a starnutiu buniek [44]. Predchádzajúca štúdia ukázala, že fragmentované mitochondrie zhoršujú produkciu kolagénu [45]. Naša štúdia ukázala, že cistanche má schopnosť zachytávať radikály, aby zabránila nerovnováhe potenciálu mitochondriálnej membrány vyvolanej ROS a akumulácii ROS v bunkách indukovaných UVB a H2O2-. (Obrázok 3A–3C). Nedávne štúdie uvádzajú, že dermálne fibroblasty sú zodpovedné za organizáciu prostredia bohatého na ECM,


cistanche proteictive effect on skin care research

Obrázok 12. Účinky cistanche na signalizáciu TGF/Smad a expresiu hsa-miR-4535 u myší ožiarených UVB. (A a B) Hladiny mRNA hsa-miR{5}} a Smad4 z dorzálnej kože myší vystavených UVB žiareniu sa detegovali pomocou qRT-PCR. (C) Hladiny proteínov TGF, p-smad2/3 a Smad4 v dorzálnych kožných tkanivách boli detegované westernovým prenosom. -tubulín sa použil ako kontrola zaťaženia. Údaje sú prezentované ako priemer ± SD. Kvantifikácia výsledkov je uvedená; *P < 0.05, **P < 0.01 verzus kontrolná skupina s vehikulom; #P < 0,05, ##P < 0,01 oproti skupine UVB plus vehikulum.


pozostáva prevažne z kolagénu typu I a III [46]. Homeostáza kolagénu typu I a III je v podstate zodpovedná za udržanie štrukturálnej a mechanickej podpory pokožky [47]. Objavujúce sa dôkazy naznačujú, že počas starnutia sa vytvára veľké množstvo ROS, čo vedie k progresívnej strate kolagénových zväzkov v dermálnych vrstvách, čo prispieva k tvorbe vrások v dôsledku narušenej dráhy TGF/Smad a zvýšenej expresie MMP [48, 49].cistanche sprostredkovanéaktivácia signalizácie TGF/Smad produkuje kolagén, ktorý udržuje integritu pokožky. V rakovinových bunkách má však rôzne účinky; pri rakovine pečene,cistanche-liečbainhibovali proliferáciu buniek HepG2 aktiváciou signalizácie TGF/Smad [50]. Na rozdiel od toho, cistanche inhiboval signalizáciu TGF/Smad, ako aj inaktivoval Smad3, čo viedlo k inhibícii rastu buniek rakoviny prostaty a pankreasu [51]. Avšak úloha cistanche pri signalizácii TGF/Smad vkožné dermálne fibroblastyzostal neznámy. Tu sme pozorovali, že cistanche upregulovala expresiu COL1A1 a COL3A1, ktorá bola downregulovaná v bunkách ošetrených H2O2 / UVB prostredníctvom aktivácie signalizácie TGF / Smad (obrázok 4A–4C, 8E, 9A). Navyše, indukcia MMP{11}} pomocou H202/UVB bola zvrátená po liečbe cistanche (obrázok 4A, 9A). Naše zistenia naznačujú, že cistanche chráni dermálne fibroblasty pred poškodením vyvolaným H2O2/UVB aktiváciou signalizácie TGF/Smad a indukciou produkcie kolagénu.


cistanche proteictive effect on skin care research

Vývoj kolagénu dermyje komplikovaný fyziologický proces a ukázalo sa, že regulácia sprostredkovaná mikroRNA prispieva k remodelácii a organizácii ECM [23, 52, 53]. Kolagén, elastín a kyselina hyalurónová (HA) sú tri hlavné proteíny, ktoré udržujú integritu pokožky. Hromadné dôkazy naznačujú, že niekoľko mikroRNA sa podieľa na starnutí pokožky prostredníctvom regulácie ECM. miR-181a bol upregulovaný v senescentných ľudských dermálnych fibroblastoch a umožnil kolagénu XVI modulovať komponenty ECM [54]. Je zaujímavé, že vysoká expresia miR-23a-3p by mohla vyvolať starnutie kože priamym potlačením hyalurónansyntázy 2, jedného z transmembránových izoenzýmov HA syntázy, ktoré syntetizujú HA [21]. Nedávno bolo hlásené, že rôzne prírodné zlúčeniny zmierňujú dermálne starnutie kože prostredníctvom regulácie mikroRNA [55–57]. Okrem toho sa cistanche údajne podieľal na regulácii mikroRNA pri cholangiokarcinóme a hepatocelulárnom karcinóme a spôsobil supresiu bunkového rastu a metastáz [58, 59]. Doteraz žiadna štúdia neidentifikovala molekulárny mechanizmus, ako je regulácia mikroRNAcistanche ošetrenébunky dermálnych fibroblastov ľudskej kože. Tu sme analyzovali profily mikroRNA polí, aby sme identifikovali niekoľko mikroRNA, ktoré sa líšili medzi kontrolou a 30 uMcistanche ošetrenéskupiny (obrázok 5A). Pomocou databáz miRDB a TargetScanHuman sme predpovedali Smad4 ako hsa-miR-4535mRNA cieľ (obrázok 5B). Expresia hsa-miR-4535 bola znížená po ošetrení cistanche v bunkách indukovaných H202/UVB (obrázok 6C, 9B). Na rozdiel od toho, expresia jeho cieľa, mRNA-Smad4, bola významne inhibovaná v bunkách vystavených H202/UVB a zvýšená po ošetrení cistanche (obrázok 6D, 9C). Rôzne štúdie ukázali, že ROS pôsobí ako medziprodukt stimulujúci stresom indukované transkripčné faktory, ako sú p53, NF-κB a HIF [60]. Preto sme usúdili, že určité miRNA by mohli byť modulované reguláciou týchto transkripčných faktorov. Použitím databázy väzbových miest transkripčného faktora (PROMO) sme identifikovali, že na promótore hsa-miR-4535 existuje jeden predpokladaný väzbový prvok p53. Naša budúca štúdia sa zameria na transkripčnú reguláciu p53 v promótore hsa-miR-4535. Okrem toho H2O2-indukovaná degradácia kolagénu nemohla byť oslabená v bunkách nadmerne exprimovaných hsa miR-4535 alebo transfekovaných si-Smad4 ani po ošetrení cistanche (obrázok 8C, 8E). Tieto zistenia ďalej potvrdzujú zapojenie hsa-miR- 4535 do regulácie syntézy kolagénu zacielením na Smad4.



cistanche proteictive effect on skin care research

Obrázok 13. Schematický diagram mechanizmu účinku cistanche. cistanche zlepšuje dráhy syntézy kolagénu TGF/Smad znížením H2O2-indukovanej has-mikroRNA-4535 na zlepšenie fotostarnutia v dermálnych fibroblastoch ľudskej kože. Skratky: ECM: extracelulárna matrica; TGF: transformujúci rastový faktor beta; TR: receptor TGF typu I; TRII: TGF receptor typu II.


Hromadné dôkazy ukázali, že akumulácia ROS vyvolaná UVB by mohla narušiť integritu kože zmenou zložiek ECM, ako aj znížením sekrécie kolagénu, elastínu a HA, a tým uľahčiť tvorbu vrások alebo progresiu rakoviny kože [61, 62]. Lokálna aplikácia kozmetických výrobkov, ktoré obsahujú prírodné zlúčeniny na ochranu pred spálenímmohli účinne zmierniť poškodenie spôsobené UVB žiarením [63]. Okrem toho výživový doplnok kyseliny suberovej chránil bezsrsté myši SKH-1 pred UVB-indukovanou degradáciou kolagénu a tvorbou vrások [64]. V tejto štúdii sme zistili, že topická aplikácia cistanche zoslabila fotopoškodenie kože spôsobené UVB žiarením zmiernením kožnej hyperplázie, tvorby vrások a syntézy kolagénu (obrázky 10B, 11, 12). Ošetrenie cistanche však významne nezvýšilo signalizáciu TGF/Smad porovnaním so skupinou vystavenou UVB v štúdii in vivo (obrázok 12C). Celkové proteínové lyzáty z kože bez oddelených vrstiev dermis a epidermis pre analýzu westernovým prenosom neboli schopné zistiť presnú úlohu cistanche pri regulácii signalizácie TGF/Smad. Avšak IHC farbenie Smad 4 a p-smad2/3 a množstvo kolagénu (obrázok 11) sa zvýšili vo vrstvách dermis myši pod podávaním cistanche, čo demonštruje úlohu cistanche podporujúcu kolagén. Celkovo tieto zistenia naznačujú, že cistanche môže preniknúť do epidermy a dostať sa do dermis, kde pôsobíschopnosti produkcie kolagénu potláčať fotopoškodenie vyvolané UVB (obrázok 13).

cistanche proteictive effect on skin care research

Na záver naše zistenia ukázali, že cistanche chráni pred H2O2/UVB-indukovanou tvorbou ROS, nerovnováhou MMP, starnutím buniek a degradáciou kolagénu v ľudských dermálnych fibroblastoch. Dermo ochranné účinky cistanche boli spojené s inhibíciou hsa-miR-4535 a aktiváciou komplexu Smad2/3/4 na zvýšenie syntézy kolagénu. Aktivácia komplexu Smad2/3/4 bola regulovaná pomocou hsa-miR-4535 prostredníctvom väzby na Smad4-3′-UTR. Preto ochranný mechanizmus cistanche proti kožnému poškodeniu vyvolanému H2O2/UVB môže zahŕňať inhibíciu syntézy Smad4/kolagénu pomocou hsa-miR- 4535


MATERIÁLY A METÓDY

Bunkové kultúry a liečby

Ľudské dermálne fibroblasty HS68 boli získané z Bioresource Collection and Research Center (BCRC, Hsinchu, Taiwan) a uchovávané v Dulbeccovom modifikovanom základnom médiu (DMEM, Thermo Fisher Scientific, MA, USA) obsahujúcom 10 percent fetálneho hovädzieho séra (Invitrogen, CA, USA ), 2 mM L-glutamínu (Sigma-Aldrich, MO, USA), 100 U/ml penicilínu (Sigma-Aldrich) a 100 ug/ml streptomycínu (Sigma Aldrich) pri 37 stupňoch a 5 percentách CO2. Na vyhodnotenie účinku cistanche proti poškodeniu buniek vyvolanému H2O{12}} boli bunky HS68 ošetrené 200 uM H2O2 počas 1 hodiny a potom spoločne ošetrené cistanche (282200, Sigma-Aldrich) počas 23 hodín. Bunky sa premyli PBS a umiestnili sa do 1 ml čerstvého PBS pred vystavením UVB. Na UVB ožarovanie boli bunky vystavené zosieťovadlu (CX-2000, Upland, CA, USA) a UVB žiarovkám s intenzitou 40 mJ/cm2 a potom ošetrené cistanche.

MTT testy

Životaschopnosť buniek HS68 po ošetrení sa merala pomocou testu MTT. Bunky HS68 boli nasadené do 96-jamkových platní a ošetrené 200 μM H2O2 počas 1 hodiny alebo ožiarené 40 mJ/cm2 UVB a potom inkubované s rôznymi koncentráciami cistanche (10, 20, 30 uM) počas 23 hodín. Po 24 hodinách sa kultivačné médium nahradilo 100 μl MTT (3-(4,{17}}dimetyltiazol-2-yl)-2,5-difenyltetrazoliumbromid) roztok (0,5 mg/ml; 5 mg/ml zásobný roztok v PBS sa zriedil kultivačným médiom na 0,5 mg/ml) počas 4 hodín pri 37 stupňoch. Potom sa fialovo sfarbený formazan solubilizoval v 100 ul dimetylsulfoxidu (DMSO) a pomocou spektrofotometra (Bio-Rad, Hercules, CA, USA) sa merala optická hustota pri 570 nm.

Prechodná transfekcia

Plazmid kódujúci Smad{0}}′-UTR v cieľovom expresnom vektore duálnej luciferázy pmirGLO miRNA bol zakúpený od spoločnosti GENEWIZ. Ľudská siRNA Smad4 (ID SASI_Hs01_00207793) a negatívna kontrola siRNA (SIC001) boli zakúpené od Sigma-Aldrich. Bunky HS68 boli transfekované inhibítorom hsa-miR-4535 (anti- sense RNA), mimika hsa-miR{12}} (senseRNA), miRNA negatívna kontrola, Smad4 siRNA s použitím jetPRIME® (Polyplus Transfection Inc, Illkirch, Francúzsko) podľa protokolu výrobcu. Potom sa bunky inkubovali s transfekčnými komplexmi počas 24 hodín.

Microarray analýza

Celková RNA sa extrahovala z kontrolnej bunky HS68 ošetrenej 10 uM a 30 uM galanínom a potom sa analyzovala profilovaním miRNA pomocou miRNA Microarray Services (Human miRNA OneArray®; kód služby: 1h216080404;).

Luciferázový reportérový test

Bunky boli kotransfekované luciferázou divokého typu a mutantnou luciferázou Smad4-3′-UTR-WT alebo Smad4-3′-UTR-MT reportérovými konštruktmi, v danom poradí, a internými kontrolnými luciferázovými plazmidmi. Po transfekciách sa luciferázové aktivity detegovali pomocou Dual-Glo Luciferase Assay System (Promega, Sunnyvale, CA, USA) podľa pokynov výrobcu. Doštičky sa odčítali na luminometri Reporter Microplate Luminometer (Turner Biosystems, Sunnyvale, CA, USA). Relatívne aktivity luciferázy boli normalizované na aktivitu luciferázy Renilla.

Western blot analýza

Bunky sa premyli s použitím 1x fyziologického roztoku pufrovaného fosfátom (PBS) a lyzovali v lyzovacom pufri (50 mM Tris-báza (pH 7,5), {{10}},5 M NaCl, 1 mM EDTA (pH 8,0), 1 mM -merkaptoetanol, 1 percento NP-40, 1 percento glycerol a koktailové tablety inhibítora proteázy (Roche Molecular Biochemicals, Horné Bavorsko, Nemecko) počas 30 minút na ľade a potom odstredené pri 12,000 x g počas 10 minút pri 4 stupňoch. Supernatanty sa odobrali do 1,5 ml mikrocentrifugačných skúmaviek. Koncentrácia proteínu v týchto supernatantoch sa stanovila Bradfordovou metódou (Bio-Rad, Hercules, CA, USA). obsahujúce rovnaké množstvo proteínu (20 ug) sa separovali pomocou 6- až 12-percentnej gradientovej elektroforézy na dodecylsulfát-polyakrylamidovom géle sodnom (SDS-PAGE) a potom sa preniesli na polyvinylidéndifluoridové (PVDF) membrány (Millipore, Bedford, MA, USA). Membrány sa blokovali pomocou blokovacieho pufra (5 percent odtučneného sušeného mlieka, 20 mM Tris-HCl, pH 7,6, 150 mM NaCl a 0,1 percenta Tween 20) počas 1 hodiny pri teplote miestnosti. Potom sa membrány inkubovali s primárnymi protilátkami (1: 1,000 riedenie) proti TGF 1 (sc-31609, Santa Cruz, CA, USA), p-smad2/3 (sc{48}}, Santa Cruz), Smad4 (sc{{ 50}}, Santa Cruz),COL1A1 (sc-28657, Santa Cruz), COL3A1 (sc-271249,Santa Cruz), p16 (10883-1-AP, Proteintech), p21 (sc{ {60}}, Santa Cruz), MMP-1 (sc-1731, Santa Cruz), GAPDH (sc{63}}, Santa Cruz) a Histone H1 (sc-10806 , Santa Cruz) cez noc pri 4 stupňoch . Potom boli inkubované s vhodnými sekundárnymi protilátkami (1:80, {000 riedenie), antikráličím (A0545), antimyším (A9044) alebo antikozím (A5420) IgG (Santa Cruz Biotechnology) počas 1 hodiny pri teplote miestnosti. Imunobloty sa detegovali pomocou substrátu zosilnenej chemiluminiscencie (ECL) chrenovej peroxidázy (HRP) (Millipore) s použitím ImageQuant LAS4000 mini (GE Healthcare Life Sciences, Little Chalfont, UK).

Extrakcia jadrového proteínu

Cytosolické a jadrové frakcie sa izolovali pomocou súpravy Nuclear/Cytosol Fractionation Kit (BioVision, Milpitas, CA, USA) podľa pokynov výrobcu. Stručne povedané, bunky sa zhromaždili a lyzovali v cytosólovom extrakčnom pufri (CEB) obsahujúcom 1 mM DTT a inhibítory proteázy. Po centrifugácii pri 12, 000 otáčkach za minútu počas 2 minút sa supernatanty (cytosolické frakcie) preniesli do nových skúmaviek. Potom sa pridal nukleárny extrakčný pufor (NEB) doplnený 1 mM DTT a inhibítory proteázy, premiešaval sa 15 s a inkuboval sa 10 minút počas 40 minút. Obsah proteínu sa kvantifikoval Bradfordovým testom (Bio-Rad) a proteíny sa separovali na 8- až 12-percentnom gradiente SDS-PAGE pre analýzu western blot.

Extrakcia RNA a qRT-PCR

Celková RNA bola extrahovaná pomocou komerčnej súpravy Direct-zol™ RNA MiniPrep (Zymo Research Corporation, CA, USA) podľa protokolu výrobcu [65, 66]. miRNA boli reverzne transkribované na cDNA pomocou súpravy na syntézu miRNA cDNA (Takara, Shiga, Japonsko), ako bolo opísané vyššie [16, 67]. Expresia hsa-miR-4535 a Smad4 bola detegovaná pomocou PCR v reálnom čase v systéme LightCycler 96 Systems (Roche, Basel, Švajčiarsko) s použitím štandardného protokolu LightCycler 480 SYBR Green I Master. 10 μl PCR reakcia zahŕňala 2 μl cDNA, 5 μl 2× SyberGreen PCR Mix, 0,5 μl dopredného primeru (10 μM), 0,5 μl reverzného primeru (10 μM) a 2 μl ddH2O. Všetky reakcie sa uskutočňovali trojmo. Na detekciu mRNA sa pre každý gén určil prahový cyklus (Ct) a expresia každého génu v porovnaní s GAPDH sa vypočítala ako 2ACt, kde ΔCt=(gén Cttarget – CtGAPDH). Na detekciu miRNA sa určilo Ct pre každý gén a expresia každého génu v porovnaní s expresiou U6 rRNA sa vypočítala ako 2ACt, kde ΔCt=(Cthsa-miR-4535 – CtU6 rRNA). Dopredné (F) a reverzné (R) priméry použité na detekciu expresie miRNA a mRNA boli: hsa-miR-4535 (3'-CAGGG TCGGUCCA5'); ľudský-Smad4 (F'-TGACCCAAA CATCACCTTCA, R'-ATACGTGGACCCTTCTG GA); ľudský-GAPDH (F'-ACCCAGAAGACTGTGGA TGG, R'-TTCAGCTCAGGGATGACCTT); myš-Smad4 ('-GTGGAAGCCACAGGAATGTT, R'-CCCA CTGAAGGACATTCGAT); myš-GAPDH (F'-CCTT CCACAATGCCAAAGTT, R'-GGGTGTGAACCA CGAGAAAT).


Imunofluorescenčná analýza

Bunky HS68 boli fixované pomocou 4 percentného paraformaldehydu počas 15 minút pri teplote miestnosti, permeabilizované s 0,1 percenta Triton X-100 počas 15 minút pri teplote miestnosti a potom blokované 5 percentným hovädzím sérovým albumínom počas 10 minút pri teplote miestnosti RT. Potom sa bunky premyli a zafarbili s Alexa Fluor 594 kozím anti-myším IgG alebo Alexa Fluor 488 oslím anti-kozím IgG sekundárnymi protilátkami (Invitrogen, Carlsbad, CA,USA) počas 2 hodín pri teplote miestnosti. Ďalej sa bunky premyli 1 x PBS a zafarbili sa DAPI na detekciu bunkového jadra (modré farbenie) počas 1 minúty pri teplote miestnosti. Obrázky na farbenie Smad4 a p smad2/3 v bunkách HS68 boli zachytené pomocou afluorescenčného mikroskopu (DP73, Olympus, Tokio, Japonsko).


Detekcia celkového a mitochondriálneho ROS

Celkové a mitochondriálne ROS boli detekované pomocou 2',7'-dichlórfluorescín diacetátu DCFH-DA (D6883, Sigma-Aldrich) a indikátora červeného mitochondriálneho superoxidu MitoSOX (Invitrogen, M36008). Bunky HS68 sa inkubovali s 5 uM DCFH-DA a 2 uM MitoSOX pri 37 stupňoch počas 30 minút. Potom sa bunky premyli 1 x PBS a zafarbili sa DAPI na detekciu bunkového jadra (modré farbenie) počas 1 minúty pri teplote miestnosti. Všetky vzorky sa analyzovali pomocou fluorescenčného mikroskopu (DP73, Olympus).

Meranie mitochondriálneho membránového potenciálu (MMP)

MMP sa stanovila detekciou zmien v mitochondriálnom potenciáli pomocou súpravy na farbenie mitochondrií (CS0390, Sigma-Aldrich) podľa pokynov výrobcu. Bunky HS68 boli naočkované na 4-jamkové sklíčka počas 24 hodín pred ošetrením. Po ošetrení sa bunky premyli 1× PBS a inkubovali sa s JC-1 pri 37 stupňoch počas 20 minút a potom sa dvakrát premyli s JC-1farbiaci pufor. Obrázky boli zachytené pomocou fluorescenčného mikroskopu (Olympus). Červená fluorescencia (agregovaná JC-1) indikovala intaktné mitochondrie, zatiaľ čo zelená fluorescencia (monomérna JC-1) indikovala narušené mitochondrie.


Anexín V a propidium jodid (PI) farbenie prietokovou cytometriou

Apoptotické bunky boli zafarbené annexinom V a PI a potom detegované prietokovou cytometriou s použitím farbenia. Stručne povedané, bunky HS68 boli ošetrené rôznymi koncentráciami (50, 100, 200, 300 a 400 uM) H202 počas 24 hodín. Bunky sa potom zozbierali trypsinizáciou a zafarbili s použitím súpravy na detekciu apoptózy Annexin V a PI (BD Biosciences, San Jose, CA, USA) podľa protokolu výrobcu. Prietoková cytometria sa uskutočňovala v základnom zariadení na triedenie buniek fluorescenčne aktivovaných (FACS), China Medical University, Taiwan, pomocou systému FACS Canto™ (BD Biosciences).

Farbenie -galaktozidázou (SA- -}gal) spojené so starnutím

Na detekciu senescentných buniek sa použila súprava na farbenie SA{{0}}gal (9860, Cell Signaling, Danvers, MA, USA). Stručne, bunky HS68 (20, 000 buniek/jamka) sa kultivovali na sklíčkach 24 hodín, fixovali sa 4 percentami paraformaldehydu počas 10 minút, premyli sa ľadovo studeným PBS a potom sa inkubovali cez noc pri 37 stupňoch s X- Gal pri pH 6,0. Po premytí boli namodro zafarbené starnúce bunky odfotografované pomocou svetelného mikroskopu (Olympus, Tokio, Japonsko).

Zvieracie modely

Štyri týždne staré nahé myši C57BL/6J boli získané od BioLasco Taiwan Co., Ltd, Taipei, Taiwan. V súlade s protokolmi National Laboratory Animal Center (NLAC) boli zvieratá chované v Centre pre zvieratá China Medical University v podmienkach kontrolovanej teploty (22 – 24 stupňov) a 12-hodinovom cykle svetlo-tma s voľným prístupom k štandardnej laboratórnej strave a vody z vodovodu počas experimentálneho obdobia. Dorzálne oblasti kože myší boli označené atramentom India a zvieratá boli rozdelené do štyroch skupín (n=6/skupina): kontrolná skupina plus vehikulum, skupina ožiarená UVB plus vehikulum, skupina ožiarená UVB plus nízka dávka ( 12 mg/kg) skupina liečená galanínom a ožiarená UVB plus vysokou dávkou (24 mg/kg)cistanche ošetrenéskupina. Pridelené oblasti kože boli ožiarené 150 mJ/cm2 UVB na expozíciu a lokálne ošetrené vehikulom alebo cistanche trikrát týždenne počas 8 týždňov. Po zvážení tela myšicistanche bola čerstvo pripravená v koncentrácii 12 mg/kg a 24 mg/kg v zmesi propylénglykol/etanol/H20 (1:1:8). Roztok (100 ul) sa topicky aplikoval na určené miesta (2 x 2 cm) na dorzálnej koži myší. Na vystavenie UVB sa myši umiestnili do UV sieťovacieho boxu, ktorý bol vybavený UVB žiarovkami. Predtým, ako myši dostali UVB žiarenie, kontrola (oblasť bez UVB žiarenia) bola pokrytá anti-UV nálepkou. Rôzne dávky cistanche alebo vehikula boli topicky aplikované na dorzálnu kožu myší po expozícii UVB. Na konci experimentu boli všetky zvieratá odvážené a usmrtené. Potom bola ich dorzálna koža rýchlo vyrezaná, okamžite zmrazená v tekutom dusíku a uložená pri -80 stupňoch na analýzu proteínov a RNA; časť sa fixovala 10 percentným roztokom formalínu na histologické farbenie.


Histologické vyšetrenie

Vzorky z biopsie kože boli fixované v 10 percentnom formalíne a rehydratované s použitím alkoholového gradientu (100 percent, 95 percent a 75 percent) najmenej 24 hodín. Potom boli vzorky vložené do parafínového vosku a narezané na hrúbku 0, 5 μm. Vložené rezy kože boli zafarbené hematoxylínom a eozínom (H&E) a Massonovým trichrómom (MT), aby sa vyhodnotila štruktúra kože a obsah kolagénových vlákien. Obrázky boli zachytené pomocou svetelného mikroskopu (Olympus).


Imunohistochémia

Vložené vzorky kožného tkaniva s hrúbkou 0,5 μm sa sušili pri 60 stupňoch cez noc po odparafínovaní v xyléne počas 30 minút a rehydratácii v 100 percentnom etanole počas 30 minút. Aktivita endogénnej peroxidázy bola blokovaná inkubáciou v blokujúcom pufri peroxidu vodíka (3 percentá H202) počas 10 minút. Po oplachovaní rezov vodou z vodovodu počas 15 minút sa nešpecifická väzba blokovala inkubáciou s 2,5 percentným konským sérom počas 10 minút. Potom boli rezy inkubované s primárnymi protilátkami (riedenie 1:100) cez noc pri 4 stupňoch. Po premytí 1 x PBS boli vzorky ošetrené sekundárnymi protilátkami počas 10 minút pri teplote miestnosti. Následne bol na sklíčka pridaný HRP polymér na 10 minút pri RT, nasledovala aplikácia substrátu DAB (Roche) na 15 s pri RT. Potom sa vzorka farbila hematoxylínom počas 5 minút pri teplote miestnosti. Nakoniec sa komplex tkanivo-polymér detegoval pomocou svetelného mikroskopu (Olympus).

Štatistická analýza

Všetky experimenty sa uskutočnili najmenej trikrát. Štatistické analýzy sa uskutočnili s použitím štatistického softvéru Graph Pad Prism5 (Graph Pad Software Inc., San Diego, CA, USA). Rozdiely medzi priemermi viacerých skupín boli hodnotené analýzou rozptylu. Dáta sa analyzovali samostatnou jednocestnou ANOVA. Rozdiely medzi jednotlivými prostriedkami boliurčené buď Tukeyho alebo Dunnettovým testom. Kvantitatívne údaje sú prezentované ako priemer ± SD zodpovedajúci trom alebo viacerým opakovaniam. P-hodnota< 0.05 was considered statistically significant. 


AUTORSKÉ PRÍSPEVKY

Konceptualizácia: WWK, CYH, JJL; Akvizícia financovania: JJL; Vyšetrovanie: YTN; Metodika: SCN, YTN; Administrácia projektu: YTN; Zdroje: WWK, CYH, JJL; Dozor: WWK, JSL; Validácia: CJC; Písanie – príprava pôvodného návrhu: YTN; Písanie - recenzia a redakcia: SCN, WWK, VVP. WWK* a CYH* prispeli k tejto práci rovnakým dielom. KONFLIKT ZÁUJMOV

Autori nedeklarujú žiadne konflikty záujmov súvisiace s touto štúdiou.

FINANCOVANIE Táto štúdia bola podporená grantmi Ministerstva vedy a technológie (MOST 109-2320- B-039-038-MY3) a Čínskej lekárskej univerzity (CMU110-MF-39).


LITERATÚRA

1. Farage MA, Miller KW, Elsner P, Maibach HI. Vnútorné a vonkajšie faktory vstarnutie pokožky: Recenzia. Int J Cosmet Sci. 2008; 30:87–95. https://doi.org/10.1111/j.1468-2494.2007.00415.x PMID:18377617 2. Mauviel A. Transformujúci rastový faktor-beta signalizácia v koži: krížová komunikácia zo stromálu na epitel. J Invest Dermatol. 2009; 129:7–9. https://doi.org/10.1038/jid.2008.385 PMID:19078982

3. Naylor EC, Watson RE, Sherratt MJ. Molekulárne aspektystarnutie pokožky. Maturitas. 2011; 69:249-56. https://doi.org/10.1016/j.maturitas.2011.04.011 PMID:21612880

4. Kähäri VM, Saarialho-Kere U. Matrix metaloproteinázy v koži. Exp Dermatol. 1997; 6:199-213. https://doi.org/10.1111/j.{8}}.1997.tb00164.x PMID:9450622

5. Kim HH, Lee MJ, Lee SR, Kim KH, Cho KH, Eun HC, Chung JH. Zväčšenie vrások kože vyvolaných UV žiarením infračerveným žiarením u bezsrstých myší. Mech Aging Dev. 2005; 126:1170–77. https://doi.org/10.1016/j.mad.2005.06.003 PMID:16118013

6. Baumann L. Starnutie kože a jeho liečba. J Pathol. 2007; 211:241-51. https://doi.org/10.1002/path.2098 PMID:17200942

7. Massagué J. Signalizácia TGF v kontexte. Nat Rev Mol Cell Biol. 2012; 13:616–30. https://doi.org/10.1038/nrm3434 PMID:22992590

8. Murphy AM, Wong AL, Bezuhly M. Modulácia signalizácie angiotenzínu II v prevencii fibrózy. Oprava tkaniva fibrogenézy. 2015; 8:7. https://doi.org/10.1186/s13069-015-0023-z PMID:25949522

9. Tu Y, Quan T. Oxidačný stres a starnutie spojivového tkaniva ľudskej pokožky. Kozmetika. 2016; 3:28. https://doi.org/10.3390/cosmetics3030028 10. Chung JH, Youn SH, Kwon OS, Eun HC, Kim KH, Park KC, Cho KH, Youn JI. Zvýšená proliferácia a syntéza kolagénu ľudských dermálnych fibroblastov v chronicky fotopoškodenej koži. Photodermatolwww.aging-us.com 25361 STARNUTIE Photoimmunol Photomed. 1996; 12:84–89. https://doi.org/10.1111/j.{15}}.1996.tb00180.x PMID:8897594


Požiadajte o viac:

E-mail:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: plus 86 15292862950

Tiež sa vám môže páčiť